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Since the advent of high-throughput sequencing technologies in the mid-2010s, RNA se-
quencing (RNA-seq) has been established as the method of choice for studying gene
expression. In comparison to microarray-based methods, which have mainly been used to
study gene expression before the rise of RNA-seq, RNA-seq is able to profile the entire
transcriptome of an organism without the need to predefine genes of interest. Today,
a wide variety of RNA-seq methods and protocols exist, including dual RNA sequenc-
ing (dual RNA-seq) and multi RNA sequencing (multi RNA-seq). Dual RNA-seq and
multi RNA-seq simultaneously investigate the transcriptomes of two or more species, re-
spectively. Therefore, the total RNA of all interacting species is sequenced together and
only separated in silico. Compared to conventional RNA-seq, which can only investi-
gate one species at a time, dual RNA-seq and multi RNA-seq analyses can connect the
transcriptome changes of the species being investigated and thus give a clearer picture of
the interspecies interactions. Dual RNA-seq and multi RNA-seq have been applied to a
variety of host-pathogen, mutualistic and commensal interaction systems.
We applied dual RNA-seq to a host-pathogen system of human mast cells and Staphylo-
coccus aureus (S. aureus). S. aureus, a commensal gram-positive bacterium, can become
an opportunistic pathogen and infect skin lesions of atopic dermatitis (AD) patients.
Among the first immune cells S. aureus encounters are mast cells, which have previously
been shown to be able to kill the bacteria by discharging antimicrobial products and re-
leasing extracellular traps made of protein and deoxyribonucleic acid (DNA). However,
S. aureus is known to evade the host’s immune response by internalizing within mast
cells. Our dual RNA-seq analysis of different infection settings revealed that mast cells
and S. aureus need physical contact to influence each other’s gene expression. We could
show that S. aureus cells internalizing within mast cells undergo profound transcriptome
changes to adjust their metabolism to survive in the intracellular niche. On the host side,
we found out that infected mast cells elicit a type-I interferon (IFN-I) response in an
autocrine manner and in a paracrine manner to non-infected bystander-cells. Our study
provides the first evidence that mast cells are capable to produce IFN-I upon infection
with a bacterial pathogen.
Die Funktionalität β1- und β2-adrenerger Rezeptoren wird durch Polymorphismen in ihrer kodierenden Region moduliert. Wir haben uns die Technik des Fluoreszenz-Resonanz- Energie-Transfers (FRET) zu Nutze gemacht, um den Einfluss der am häufigsten vorkommenden Polymorphismen (Ser49Gly und Gly389Arg im β1AR, Arg16Gly und Gln27Glu im β2AR) auf die Rezeptorkonformation nach Aktivierung zu untersuchen. Dafür wurden FRET-Sensoren für die beiden βAR-Subtypen mit einem gelb-fluoreszierenden Protein (YFP) sowie einem cyan-fluoreszierenden Protein (CFP oder Cerulean) in der dritten intrazellulären Schleife bzw. am C-Terminus verwendet. Nach Stimulierung der βARSensoren konnte die Aktivierung der polymorphen Rezeptorvarianten in lebenden Zellen in Echtzeit untersucht werden. Dabei behielten die FRET-Sensoren sowohl die Bindungsaffinitäten der nativen Rezeptoren als auch eine intakte Funktionalität hinsichtlich der Bildung von sekundären Botenstoffen. Der Vergleich der Aktivierungskinetiken der verschieden polymorphen Varianten des β1AR und β2AR ergab keine signifikanten Unterschiede nach einer einmaligen Stimulation. Es zeigte sich jedoch, dass Rezeptorpolymorphismen die Aktivierungskinetik vorstimulierter βAR erheblich beeinflussen. So konnten wir im Vergleich zur ersten Aktivierung eine schnellere Aktivierung der Gly16-Varianten des β2AR sowie des Gly49Arg389-β1AR feststellen, während die Arg16-β2AR-Variante und der Ser49Gly389-β1AR dagegen bei einer wiederholten Stimulation langsamer aktiviert wurden. Diese Ergebnisse lassen auf ein "Rezeptorgedächtnis" schließen, das spezifisch für bestimmte polymorphe Rezeptorvarianten ist und eine βAR-Subtyp-spezische Ausprägung zeigt. Die Ausbildung der unterschiedlichen Aktivierungskinetiken hing von der Interaktion des Rezeptors mit löslichen intrazellulären Faktoren ab und bedurfte einer Phosphorylierung intrazellulärer Serin- und Threonin-Reste durch G-Protein-gekoppelte Rezeptorkinasen. Die Interaktion mit löslichen intrazellulären Faktoren scheint für den β1AR weniger stark ausgeprägt zu sein als für den β2AR. Die cAMP-Produktion war für die schneller werdenden, “hyperfunktionellen” Gly16-β2ARVarianten signifikant um mehr als 50% höher im Vergleich zur “hypofunktionellen” Arg16- Variante. Die unterschiedliche Funktionalität spiegelte sich im Therapieausgang bei Tokoysepatientinnen wider, dessen Erfolg mit dem Arg16Gly Polymorphismus verknüpft war. Die Daten implizieren eine intrinsische, polymorphismusabhängige Eigenschaft der βAR, die die Aktivierungskinetik der Rezeptoren bei wiederholten Stimulationen determiniert. Diese könnte auch für die zwischen Individuen variierende Ansprechbarkeit auf β-Agonisten und β-Blocker mitverantwortlich sein.