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Im Vergleich zu anderen Retroviren, zeichnen sich Foamyviren durch eine Reihe von Eigenschaften aus, die sie besonders attraktiv für die Vektorentwicklung und somatische Gentherapie machen. Foamyviren exprimieren ihr Pol Prekursorprotein unabhängig von Gag, d.h. von ihrer eigenen gespleisten mRNA. Zwar ist der genaue Pol-Verpackungsmechanismus von Foamyviren noch nicht vollständig aufgeklärt, frühere Studien zeigten jedoch, dass die prägenomische RNA essentiell für die Pol-Enkapsidierung ist. Zwei Pol-Verpackungssequenzen (PES) wurden identifiziert, welche sich in den cis-aktiven Sequenzen (CAS) der prägenomischen RNA befinden (Heinkelein et al., 1998; Peters et al., 2005). In dieser Arbeit wurde untersucht, ob die PESI und PESII Sequenzen alleine ausreichend für die Pol-Verpackung sind. Zusätzich wurde der Einfluss von verschiedenen Teilen der ca. 2000 nt langen CASII Sequenz auf den Vektortransfer ohne Verlust der Pol-Enkapsidierung untersucht. Es konnte gezeigt werden, dass PESI und PESII alleine nicht ausreichend für die Pol-Verpackung ins foamyvirale Partikel sind. Die Verkürzung des CASII Elements zeigte keinen Effekt auf die Pol-Verpackung und den Vektortransfer. Das Einfügen eines zusätzlichen zentralen Polypurintraktes führte jedoch zur signifikanten Erhöhung der Transduktionseffizienz von FV Vektoren. Diese Ergebnisse führten zur Entwicklung eines neuen foamyviralen Vektors (pTW01), der ca. 850nt kürzer ist als die früher etablierten FV Vektoren, aber immer noch die gleiche Transduktionseffizienz auf Fibroblasten und humanen Stammzellen zeigt. Dieser Vektor mit einer höheren Verpackungskapazität und Sicherheit, eignet sich hervorragend für den Einsatz in gentherapeutischen Studien. Zusätzlich konnte gezeigt werden, dass eine heterologe Verpackung zwischen zwei unterschiedlichen Foamyviren (PFV und SFVmac) zu einem geringen Prozentsatz stattfindet. Als erster Schritt in der Entwickung eines neues Systems für eine einfache und kostengünstige Vektorvirusproduktion wurde gezeigt, dass die Expression der foamyviralen Gag, Pol und Env Proteine in Saccharomyces cerevisiae stattfinden kann.
Viral vectors are rapidly being developed for a range of applications in research and gene therapy. Prototype foamy virus (PFV) vectors have been described for gene therapy, although their use has mainly been restricted to ex vivo stem cell modification. Here we report direct in vivo transgene delivery with PFV vectors carrying reporter gene constructs. In our investigations, systemic PFV vector delivery to neonatal mice gave transgene expression in the heart, xiphisternum, liver, pancreas, and gut, whereas intracranial administration produced brain expression until animals were euthanized 49 days post-transduction. Immunostaining and confocal microscopy analysis of injected brains showed that transgene expression was highly localized to hippocampal architecture despite vector delivery being administered to the lateral ventricle. This was compared with intracranial biodistribution of lentiviral vectors and adeno-associated virus vectors, which gave a broad, non-specific spread through the neonatal mouse brain without regional localization, even when administered at lower copy numbers. Our work demonstrates that PFV can be used for neonatal gene delivery with an intracranial expression profile that localizes to hippocampal neurons, potentially because of the mitotic status of the targeted cells, which could be of use for research applications and gene therapy of neurological disorders.