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Viele humane Sarkome sind durch spezifische chromosomale Translokationen oder typische genetische Amplifikationen definiert, welche in der Differentialdiagnostik insbesondere in Fällen, bei denen klinische Daten, Morphologie und Immunhistochemie alleine nicht ausreichend wegweisend sind. Die Formalin-fixiertem Paraffin-eingebetteten (FFPE-) Gewebe von 15 Ewing-Sarkomen, 4 Klarzellsarkomen, 9 Synovialsarkomen, 4 alveolären und 7 embryonalen Rhabdomyosarkomen und 25 Liposarkomen verschiedenen Subtyps wurden mittels Fluoreszenz-in-situ-Hybridisierung (FISH) untersucht um ein Sarkom-spezifisches FISH-Sondenset zur Detektion spezifischer chromosomaler Aberrationen in der Routinediagnostik zu etablieren. Es konnte gezeigt werden, dass die FISH in diesem Aufgabenfeld im Vergleich zur PCR ebenfalls eine hoch effiziente zytogenetische Methode mit hoher Spezifität und hohen positiven Vorhersagewerten mit dem Vorteil der unproblematischen Anwendung an FFPE-Geweben ist. Zur Detektion des Isochromosom 12p , i(12p), als Beispiel für komplexere chromosmale Aberrationen, wurden 7 FFPE-Gewebe aus Keimzelltumoren mit 12p- und 12q-detektierenden FISH-Sonden hybridisiert. Die Detektion des i(12p) konnte im Rahmen dieser Arbeit mittels FISH nicht erreicht werden. Zusammenfassend ist die FISH eine hoch effiziente zytogenetische Methode zur Detektion spezifischer chromosomaler Aberrationen in FFPE-Geweben aus humanen Sarkomen mit hoher Eignung zur Anwendung in der Routinediagnostik.
Diagnosing any of the more than 30 types of T-cell lymphomas is considered a challenging task for many pathologists and currently requires morphological expertise as well as the integration of clinical data, immunophenotype, flow cytometry and clonality analyses. Even considering all available information, some margin of doubt might remain using the current diagnostic procedures. In recent times, the genetic landscape of most T-cell lymphomas has been elucidated, showing a number of diagnostically relevant mutations. In addition, recent data indicate that some of these genetic alterations might bear prognostic and predictive value. Extensive genetic analyses, such as whole exome or large panel sequencing are still expensive and time consuming, therefore limiting their application in routine diagnostic. We therefore devoted our effort to develop a lean approach for genetic analysis of T-cell lymphomas, focusing on maximum efficiency rather than exhaustively covering all possible targets. Here we report the results generated with our small amplicon-based panel that could be used routinely on paraffin-embedded and even decalcified samples, on a single sample basis in parallel with other NGS-panels used in our routine diagnostic lab, in a relatively short time and with limited costs. We tested 128 available samples from two German reference centers as part of our routine work up (among which 116 T-cell lymphomas), which is the largest routine diagnostic series reported to date. Our results showed that this assay had a very high rate of technical success (97%) and could detect mutations in the majority (79%) of tested T-cell lymphoma samples.