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Das Ziel der vorliegenden Dissertation war die Entwicklung neuartige Ansätze zur Identifizierung von biologisch aktiven Wirkstoffen, die in die Metamorphose von holometabolen Insekten eingreifen. Hexamerine und Neuropeptide besitzen sehr unterschiedliche Funktionen. Während Neuropeptide zusammen mit anderen Gewebshormonen auf einer übergeordneten regulatorischen Ebene wirken, sind Hexamerine als Speicher- und Verteidigungsproteine ein Endglied dieser hormonellen Regulationskaskade. In der vorliegenden Arbeit wurden zwei Fragestellungen bearbeitet: 1) Im ersten Projekt sollten allatotrope Substanzen im Gehirn der großen Wachsmotte Galleria mellonella durch Screening einer Expressionsbibliothek mit polyklonalen Antiseren identifiziert werden. Dabei wurde das Neuropeptid Corazonin identifiziert. Die vollständige Corazonin-mRNA wurde kloniert und sequenziert. Das Expressionsmuster der Corazonin-mRNA und des Peptids wurde mittels Northern-Analyse und in-situ-Hybridisierung charakterisiert. Corazonin wird in vier Zellpaaren, die zu den lateralen neurosekretorischen Zellen gehören, exprimiert. Die Axone dieser Zellen verlaufen ipsilateral zu den Nervi corpori cardiaci I+II, feine Fasern verzweigen sich in die am Ösophagus angrenzende Hirnregion hinein. Corazonin wird offensichtlich an den Axon- Endigungen in den Corpora cardiaca in die Hämolymphe freigesetzt. Einige feine Fasern enden in den Corpora allata bzw. am Vorderdarm. Der Nachweis, dass Corazonin tatsächlich eine allatotrope Wirkung hat, konnte nicht erbracht werden. 2) Die Protein/Protein-Interaktion zwischen Hexamerinen und dem Hexamerinrezeptor der Schmeißfliege Calliphora vicina wurde durch Two-Hybrid-Experimenten analysiert. Durch Interaktionstest mit trunkierten Proteinfragmenten wurden die Bindungsdomänen beider Proteine kartiert. Als rezeptorbindende Domäne des Arylphorins wurde ein 49 AS großes Peptid in der Domäne-3 des Arylphorin- Monomers identifiziert. Die Ligandenbindungsdomäne des Hexamerinrezeptors wurde in den ersten 24 AS des N-Terminus kartiert. Ausgehend von diesen Ergebnissen wurde ein HTS-Protokoll entwickelt, das zur Identifizierung von Substanzen verwendet werden kann, welche die Bindung dieser beiden Proteine beeinflussen. Eine Two-Hybrid-Bibliothek wurde ausgehend von 7dL-Fettkörper-RNA konstruiert und mit "Hexamerinrezeptor-Ködern" gescreent. Dabei wurden zwei neue Interaktionspartner des Hexamerinrezeptors gefunden und genauer charakterisiert. Der erste identifizierte Interaktionspartner - d-AP-3 - ist Teil eines Adaptin- Komplexes, der als Adapter zwischen membranständigen Rezeptoren und Clathrin oder ähnlichen Proteinen an der rezeptorvermittelten Endozytose beteiligt ist. Die Adaptin-Interaktionsdomäne liegt innerhalb des ABP64-Spaltprodukts des Hexamerinrezeptors. Die Funktion des zweiten Interaktionspartners - AFP - ist unbekannt. AFP wird im anterioren Teil des Fettkörpers und in Hämozyten exprimiert. Die Interaktion zwischen dem Hexamerinrezeptor und AFP ist demnach auf diesen Teil des Fettkörpers beschränkt. Die mit AFP interagierende Domäne des Hexamerinrezeptors liegt innerhalb des P30-Spaltprodukts.
The fruit fly Drosophila melanogaster possesses approximately 150 brain clock neurons that control circadian behavioral rhythms. Even though individual clock neurons have self-sustaining oscillators, they interact and synchronize with each other through a network. However, little is known regarding the factors responsible for these network interactions. In this study, we investigated the role of CCHamide1 (CCHa1), a neuropeptide expressed in the anterior dorsal neuron 1 (DN1a), in intercellular communication of the clock neurons. We observed that CCHa1 connects the DN1a clock neurons to the ventral lateral clock neurons (LNv) via the CCHa1 receptor, which is a homolog of the gastrin-releasing peptide receptor playing a role in circadian intercellular communications in mammals. CCHa1 knockout or knockdown flies have a generally low activity level with a special reduction of morning activity. In addition, they exhibit advanced morning activity under light-dark cycles and delayed activity under constant dark conditions, which correlates with an advance/delay of PAR domain Protein 1 (PDP1) oscillations in the small-LNv (s-LNv) neurons that control morning activity. The terminals of the s-LNv neurons show rather high levels of Pigment-dispersing factor (PDF) in the evening, when PDF is low in control flies, suggesting that the knockdown of CCHa1 leads to increased PDF release; PDF signals the other clock neurons and evidently increases the amplitude of their PDP1 cycling. A previous study showed that high-amplitude PDP1 cycling increases the siesta of the flies, and indeed, CCHa1 knockout or knockdown flies exhibit a longer siesta than control flies. The DN1a neurons are known to be receptive to PDF signaling from the s-LNv neurons; thus, our results suggest that the DN1a and s-LNv clock neurons are reciprocally coupled via the neuropeptides CCHa1 and PDF, and this interaction fine-tunes the timing of activity and sleep.