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In der vorliegenden Arbeit wurden 15 gesunde Probanden und vier Patienten mit dem primären humoralen Immundefekt "Common Variable Immunodeficiency" (CVID) auf den Immunphänotyp ihrer Lymphozyten sowie die Expression des Transkriptionsfaktors PRDI-BF1/Blimp-1 hin untersucht. Zu Kontrollzwecken wurden zusätzlich einige permanente Lymphozyten-Zelllinien verwendet (B-lymphoblastoide Zelllinien und Jurkat-Zellen). Nach der Blutentnahme wurde zunächst in Vollblut-Lyse-Technik der Immunphänotyp bestimmt, begleitend wurde ein großes Blutbild auf einem Hämatologieautomaten gemessen. Im Vergleich zu den gesunden Probanden zeigten die CVID-Patienten im Differentialblutbild folgende statistisch signifikante Abweichungen: relative Lymphopenie, relative Neutrophilie, relative und absolute Eosinopenie (insgesamt im Sinne einer entzündlichen Reaktion). Durchflusszytometrisch zeigten die Patienten folgende Auffälligkeiten: relative Expansion der zytotoxischen T-Lymphozyten, absolute Verminderung der NK-Zellen, relative Expansion HLA-DR-positiver Lymphozyten, absolute Verminderung CD27-positiver Lymphozyten, relative und absolute Verminderung CD27-positiver B-Zellen (B-Gedächtnis-Zellen). Bei allen vier Patienten war der Anteil IgM-negativer ("geswitchter") Memory-Zellen an den gesamten B-Lymphozyten stark vermindert. Nach Stimulation mit Staphylococcus aureus Stamm Cowan I und Interleukin 2 waren bei allen untersuchten Patienten und gesunden Probanden Immunglobuline im Zellkulturüberstand sowie PRDI-BF1-mRNA im Zelllysat nachweisbar, sodass auf einen gravierenden Defekt von PRDI-BF1 als Ursache der CVID (z. B. im Sinne einer homozygoten Gendeletion) kein Hinweis bestand. Bei den als Negativkontrolle vorgesehenen T-Lymphozyten und in einer permanenten T-Zelllinie (Jurkat) wurde überraschend ebenfalls PRDI-BF1-mRNA nachgewiesen. Dieser Befund konnte durch mehrfache Wiederholung, Kontrollen und hohe Aufreinigung der T-Lymphozyten sowie Auftrennung in ihre Subpopulationen bestätigt werden und wurde von anderen Arbeitsgruppen ebenfalls reproduziert und publiziert. Die Ergebnisse ließen vermuten, dass PRDI-BF1 bei Antigen-erfahrenen, CD45RA-negativen T-Lymphozyten stärker exprimiert wird und daher ebenso wie bei B-Lymphozyten eine Rolle in deren terminaler Differenzierung spielt.
The opportunistic fungal pathogen Aspergillus fumigatus can cause severe infections, particularly in immunocompromised individuals. Upon infection, A. fumigatus faces the powerful and directly acting immune defense of the human host. The mechanisms on how A. fumigatus evades innate immune attack and complement are still poorly understood. Here, we identify A. fumigatus enolase, AfEno1, which was also characterized as fungal allergen, as a surface ligand for human plasma complement regulators. AfEno1 binds factor H, factor-H-like protein 1 (FHL-1), C4b binding protein (C4BP), and plasminogen. Factor H attaches to AfEno1 via two regions, via short conserved repeats (SCRs) 6–7 and 19–20, and FHL-1 contacts AfEno1 via SCRs 6–7. Both regulators when bound to AfEno1 retain cofactor activity and assist in C3b inactivation. Similarly, the classical pathway regulator C4BP binds to AfEno1 and bound to AfEno1; C4BP assists in C4b inactivation. Plasminogen which binds to AfEno1 via lysine residues is accessible for the tissue-type plasminogen activator (tPA), and active plasmin cleaves the chromogenic substrate S2251, degrades fibrinogen, and inactivates C3 and C3b. Plasmin attached to swollen A. fumigatus conidia damages human A549 lung epithelial cells, reduces the cellular metabolic activity, and induces cell retraction, which results in exposure of the extracellular matrix. Thus, A. fumigatus AfEno1 is a moonlighting protein and virulence factor which recruits several human regulators. The attached human regulators allow the fungal pathogen to control complement at the level of C3 and to damage endothelial cell layers and tissue components.
Aspf2 From Aspergillus fumigatus Recruits Human Immune Regulators for Immune Evasion and Cell Damage
(2018)
The opportunistic fungal pathogen Aspergillus fumigatus can cause life-threatening infections, particularly in immunocompromised patients. Most pathogenic microbes control host innate immune responses at the earliest time, already before infiltrating host immune cells arrive at the site of infection. Here, we identify Aspf2 as the first A. fumigatus Factor H-binding protein. Aspf2 recruits several human plasma regulators, Factor H, factor-H-like protein 1 (FHL-1), FHR1, and plasminogen. Factor H contacts Aspf2 via two regions located in SCRs6–7 and SCR20. FHL-1 binds via SCRs6–7, and FHR1 via SCRs3–5. Factor H and FHL-1 attached to Aspf2-maintained cofactor activity and assisted in C3b inactivation. A Δaspf2 knockout strain was generated which bound Factor H with 28% and FHL-1 with 42% lower intensity. In agreement with less immune regulator acquisition, when challenged with complement-active normal human serum, Δaspf2 conidia had substantially more C3b (>57%) deposited on their surface. Consequently, Δaspf2 conidia were more efficiently phagocytosed (>20%) and killed (44%) by human neutrophils as wild-type conidia. Furthermore, Aspf2 recruited human plasminogen and, when activated by tissue-type plasminogen activator, newly generated plasmin cleaved the chromogenic substrate S2251 and degraded fibrinogen. Furthermore, plasmin attached to conidia damaged human lung epithelial cells, induced cell retraction, and caused matrix exposure. Thus, Aspf2 is a central immune evasion protein and plasminogen ligand of A. fumigatus. By blocking host innate immune attack and by disrupting human lung epithelial cell layers, Aspf2 assists in early steps of fungal infection and likely allows tissue penetration.